Die Unterfamilie Chordopoxvirinae fasst acht Gattungen der Familie Poxviridae zusammen, die bei Wirbeltieren (Vertebraten), beispielsweise Säugetieren, Vögeln und Nagetieren, Infektionen verursachen können. Die Unterfamilie wurde geschaffen, um diese Gattungen von den Mitgliedern der Unterfamilie Entomopoxvirinae zu separieren, die nur Pockenviren bei Insekten umfassen. Aufgrund dieser Abtrennung wurde der Name der Gattung nicht nach den Wirbeltieren „Vertebropoxvirinae“ benannt, sondern nach dem Stamm der Chordatiere, obwohl noch keine Pockenviren bei nicht zu den Wirbeltieren gehörenden Chordatieren isoliert wurden. Diese Einteilung nach dem Wirtsspektrum spiegelt sich auch in der phylogenetischen Distanz zwischen Chordo- und Entomopoxvirinae wider.

Zwischen den Gattungen der Chordopoxvirinae wird eine serologische Kreuzreaktivität beobachtet, wobei die Mitglieder der Avipoxviren bei Vögeln diese Eigenschaft weniger aufweisen als die Viren bei Säugetieren. Einige Mitglieder der Chordopoxvirinae verursachen typische Läsionen auf der Chorioallantoismembran, wenn sie in embryonierten Hühnereiern für Laborzwecke angezüchtet werden.

Aufbau und Genom Die Mitglieder der Chordopoxvirinae stellen sich als ovoide oder Backstein-förmige Virionen dar.

Das lineare, doppelsträngige DNA-Genom besitzt gewöhnlich einen niedrigen GC-Gehalt von 30 bis 40 %, kann aber von 25 bis 67 % variieren. Ein hoher GC-Gehalt liegt bei den Gattungen Parapoxvirus und Crocodylidpoxvirus sowie dem Molluscum-contagiosum-Virus vor.Eneida L. Hatcher, Chunlin Wang, Elliot J. Lefkowitz: Genome Variability and Gene Content in Chordopoxviruses: Dependence on Microsatellites. In: Viruses, Band 7, Nr. 4, 2015, S. 2126–2146; doi:10.3390/v7042126 ().Yu Li, Hermann Meyer, Hui Zhao, Inger K. Damon: GC Content-Based Pan-Pox Universal PCR Assays for Poxvirus Detection. In: J Clin Microbiol., Band 48, Nr. 1, Januar 2010, S. 268–276; doi:10.1128/JCM.01697-09, , Epub 11. November 2009 ().

Das Genom von Molluscum contagiosum virus Subtyp 1 hat einen GC-Gehalt von 63,4 %, das der Parapoxviren Bovine papular stomatitis virus ( BV-AR02) und Orf virus ( OV-SA00) hat 64,5 % respektive 64,3 %. Das Genom des Nile crocodilepox virus hat eine Länge von 190.054 Basenpaaren (bp). Es kodiert vorhergesagt für 173 Proteine bei einem GC-Gehalt von 61,9 % ( Simbabwe).David M. Needham, Alexandra Z. Worden et al.: , in: PNAS, 23. September 2019, doi:10.1073/pnas.1907517116, ISSN 0027-8424, hier:

Eine stets gleichförmig angeordnete Gruppe von zentralen Genen charakterisiert die Chordopoxvirinae trotz variabler Sequenzen zwischen den Gattungen.

Systematik Die innere Systematik der Chordopoxvirinae ist nach ICTV, Stand 20. März 2026, wie folgt:ICTV: Taxonomy Browser.ICTV: Virus Metadata Resource (VMR).

Familie Poxviridae Unterfamilie Chordopoxvirinae Gattung Avipoxvirus (Vogelpockenviren) Spezies Avipoxvirus canarypox Spezies Avipoxvirus flamingopox Spezies Avipoxvirus fowlpox (früher Avipoxvirus galli, ehem. Typus), mit Fowlpox virus Spezies Avipoxvirus penguinpox Spezies Avipoxvirus pigeonpox Spezies Avipoxvirus quailpox Spezies Avipoxvirus turkeypox Gattung Capripoxvirus (Schaf- und Ziegenpockenviren) Spezies Capripoxvirus goatpox (früher Capripoxvirus caprae), mit Goatpox virus Spezies Capripoxvirus lumpyskinpox (früher Capripoxvirus bovis nodularis) mit Dermatitis-nodularis-Virus Spezies Capripoxvirus sheeppox (früher Capripoxvirus ovis, ehem. Typus), mit Sheeppox virus Gattung Centapoxvirus Spezies Centapoxvirus microtuspox Spezies Centapoxvirus yokapox(ehem. Typus) mit Yokapox virus (YOKV) Gattung Cervidpoxvirus Spezies Cervidpoxvirus muledeerpox mit Mule deerpox virus alias Deerpox-Virus (MDPV) Gattung Crocodylidpoxvirus (Krokodilpockenviren) Spezies Crocodylidpoxvirus nilecrocodilepox mit Nile crocodilepox virus (Nilkrokodilpockenvirus, CRV) Gattung Leporipoxvirus (Hasenpockenviren) Spezies Leporipoxvirus myxoma (früher Leporipoxvirus myxomatosis, ehem. Typus) mit Myxoma virus (Myxomatosevirus, MYXV) → Myxomatose Spezies Leporipoxvirus shope (früher Leporipoxvirus fibromatosis) mit Shope fibroma virus alias Rabbit fibroma virus (Kaninchenfibromvirus, RFV) Spezies Leporipoxvirus squirrelfibroma mit Squirrel fibroma virus (Hörnchenfibromvirus, SFV) Spezies „Hare fibroma virus“ (Hasenfibromvirus, FIBV) Gattung Macropopoxvirus (Kängurupockenvirus) Spezies Macropopoxvirus mfuliginosuspox mit Western kangaroopox virus Spezies Macropopoxvirus mgiganteuspox mit Eastern kangaroopox virus Gattung Molluscipoxvirus (Weichtierpockenviren) Spezies: Molluscipoxvirus molluscum mit Molluscum contagiosum virus Gattung Mustelpoxvirus Spezies Mustelpoxvirus seaotterpox mit Sea otterpox virus Gattung Orthopoxvirus (Echte Pockenviren) Spezies Orthopoxvirus abatinomacacapox mit Orthopoxvirus Abatino Spezies Orthopoxvirus akhmetapox mit Akhmeta-Virus Spezies Orthopoxvirus camelpox mit Kamelpockenvirus Spezies Orthopoxvirus cowpox mit Cowpox-Virus Spezies Orthopoxvirus ectromelia mit Ectromelia-Virus Spezies Orthopoxvirus monkeypox(früher Orthopoxvirus simiae) mit Affenpockenvirus Spezies Orthopoxvirus raccoonpox mit Waschnär-Pockenvirus Spezies Orthopoxvirus skunkpox mit Skunk-Pockenvirus Spezies Orthopoxvirus taterapox mit Taterapox-Virus Spezies Orthopoxvirus vaccinia (ehem. Typus) mit Vaccinia-Virus (Vacciniavirus) Spezies Orthopoxvirus variola (früher Orthopoxvirus variolae) mit Variola-Virus Spezies Orthopoxvirus volepox mit Volepox-Virus Spezies Oryzopoxvirus cotia mit Cotia-Virus Gattung Oryzopoxvirus Spezies: Oryzopoxvirus cotia mit Cotia virus Gattung Parapoxvirus (Parapockenviren) Spezies Parapoxvirus bovinestomatitis Spezies Parapoxvirus orf (früher Parapoxvirus ovis, ehem. Typus) mit Orf-Virus Spezies Parapoxvirus pseudocowpox Spezies Parapoxvirus reddeerpox Spezies Parapoxvirus sealpox Gattung Pteropopoxvirus, Spezies Pteropopoxvirus pteropox mit Pteropox-Virus Gattung Salmonpoxvirus, Spezies Salmonpoxvirus gillpox mit Gattung Sciuripoxvirus, Spezies Sciuripoxvirus squirrelpox (früher Squirrel parapoxvirus) mit Squirrelpox-Virus alias (Berliner Eichhörnchen-Pockenvirus, BerSQPV), nicht näher verwandt mit dem „Britischen Eichhönchen-Pockenvirus“, „UK SPQV“ Gattung Suipoxvirus (Schweinepockenviren),SIB: Suipoxvirus, auf: ViralZone Spezies Suipoxvirus swinepox (früher Suipoxvirus suis) mit Swinepox-Virus (Schweinepockenvirus, SWPV) Gattung Vespertilionpoxvirus, Spezies Vespertilionpoxvirus eptesipox mit Eptesipox-Virus Gattung Yatapoxvirus (Yatapockenviren),SIB: Yatapoxvirus, auf: ViralZone Spezies Yatapoxvirus yabapox (ehem. Typus) mit (Yaba-Affentumor-Virus, YMTV) Spezies Yatapoxvirus tanapox mit Tanapox-Virus (Tanapockenvirus), inkl. (YLDV)

Quellen R. M. Buller et al.: Subfamily Chordavirinae. In: C. M. Fauquet, M. A. Mayo et al.: Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. London, San Diego, 2005, S. 122, ISBN 0-12-249951-4 B. Moss: Poxviridae: The Viruses and Their Replication. In: David M. Knipe, Peter M. Howley (eds.-in-chief): Fields’ Virology. 5. Auflage, Band 2, Philadelphia 2007, S. 2906ff ISBN 0-7817-6060-7

Einzelnachweise SIB: Leporipoxvirus, auf: ViralZone. Red squirrels in Bangor, North Wales on the increase, auf: SquirrelWeb vom 23. Juli 2018.

C. L. Afonso, G. Delhon, E. R. Tulman, Z. Lu, A. Zsak, V. M. Becerra, L. Zsak, G. F. Kutish, D. L. Rock: Genome of Deerpox Virus. In: J Virol., Band 79, Nr. 2, Januar 2005, S. 966–977; doi:10.1128/JVI.79.2.966-977.2005, , PMID 15613325 (). Peter J. Kerr, June Liu, Isabella Cattadori, Elodie Ghedin, Andrew F. Read, Edward C. Holmes: Myxoma Virus and the Leporipoxviruses: An Evolutionary Paradigm. In: MDPI - Viruses, Band 7, Nr. 3, 7. März 2015, S. 1020–1061; doi:10.3390/v7031020, PMID 25757062, , Epub 6. März 2015 (). Chris Upton, Ginny Emerson, Mark A O’Dea: ICTV Proposal 2016.013aD (PDF; 634 kB). G. Wibbelt, S. H. Tausch, P. W. Dabrowski, O. Kershaw, A. Nitsche, L Schrick: Berlin squirrelpox virus, a new poxvirus in red squirrels, Berlin, Germany. In: Emerg Infect Dis. Vol. 23, Nr. 10, Oktober 2017, doi:10.3201/eid2310.171008 (). Claudia Romeo: Parasites And Biological Invasions: Alien Grey Squirrel (Sciurus carolinensis) And Native Red Squirrel (S. vulgaris) As Model System. (PDF; 1,7 MB) Università degli studi di Milano, dipartimento di bioscienze, WS 2012/2013. Shin-Lin Tu, Yoshinori Nakazawa, Jinxin Gao, Kimberly Wilkins, Nadia Gallardo-Romero, Yu Li, Ginny L. Emerson, darin S. Carroll, Chris Upton: Characterization of Eptesipoxvirus, a novel poxvirus from a microchiropteran bat. In: Virus Genes, Dezember 2017, Band 53, Issue 6, S. 856–867; doi:10.1007/s11262-017-1485-4 ().

Weblinks Chordopoxvirinae (NCBI)

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